Matériel :
Cellules/tissus biologiques (ex : lignées cellulaires, spermatozoïdes, ovocytes, embryons)
Milieu de culture spécifique (DMEM, RPMI, FBS, etc.)
Cryoprotecteurs (DMSO, glycérol, éthylène glycol)
Cryotubes stériles
Boîte de congélation à refroidissement contrôlé (-1°C/min)
Azote liquide (-196°C)
Bain-marie à 37°C pour décongélation
Hotte à flux laminaire
Méthode :
Préparation des échantillons
Cultiver les cellules dans des conditions optimales (37°C, 5% CO₂) et récolter lorsqu’elles atteignent 70-80% de confluence.
Centrifuger à 300g pendant 5 minutes et éliminer le surnageant.
Resuspendre dans un milieu cryoprotecteur (ex : 90% FBS + 10% DMSO).
Congélation progressive
Aliquoter la suspension cellulaire dans des cryotubes stériles.
Placer les cryotubes dans une boîte de congélation contrôlée (-1°C/min) pendant 24h à -80°C.
Stockage en azote liquide :
Après 24h, transférer les cryotubes dans un réservoir d’azote liquide (-196°C) pour stockage à long terme.
Décongélation :
Plonger rapidement le cryotube dans un bain-marie à 37°C jusqu’à dissolution complète de l’échantillon congelé.
Centrifuger, laver avec un milieu de culture sans cryoprotecteur et re-semer les cellules.
Références :
"Cryoconservation de cellules spermatiques et de cellules souches pluripotentes de mammifères dans un milieu synthétique et chimiquement défini", Lucie Gavin-Plagne (2018)
"Cryoconservation d’embryons bovins produits in vitro et biopsiés", Sarah Janati Idrissi (2022)
Note : en français, chercher avec le mot "Cryoconservation"
Matériel :
Organismes capables de cryobiose (ex : nématodes antarctiques, insectes résistants au gel)
Chambre climatique programmable (de +20°C à -80°C)
Cryomicroscope pour observation in situ
Thermomètre infrarouge
Bain-marie pour réactivation
Méthode :
Pré-conditionnement des organismes
Maintenir les spécimens à 4°C pendant plusieurs jours pour acclimatation.
Réduire progressivement la température jusqu’à atteindre des valeurs subzéro (-20°C à -80°C).
Observation de la cryobiose
Vérifier la capacité des organismes à résister au gel sans cristallisation intracellulaire (observation sous cryomicroscope).
Réactivation :
Réchauffer lentement jusqu’à température ambiante.
Ajouter progressivement de l’eau ou un milieu de culture pour restaurer l’activité cellulaire.
Adresse :
30 Allée des Riverains
69000 Lyon
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